Что исследуют с помощью щелевой лампы?

Содержание

1. Показания к использованию щелевой лампы
2. Противопоказания и меры предосторожности при работе со щелевой лампой
3. Подготовка к использованию щелевой лампы
4. Процедура обследования с помощью щелевой лампы
5. Осложнения
6. Последующее наблюдение
7. Список литературы

Щелевая лампа представляет собой бинокулярный микроскоп, который обеспечивает исследователю стереоскопическое (т.е. трехмерное) изображение глаза. Он мало изменился с момента его разработки Гольдманом в 1937 году. Однако существуют альтернативные методы исследования глаза с использованием портативных цифровых фото- и видеосъемочных устройств. Эти новые методы могут дать некоторые преимущества, но не могут обеспечить стереоскопическое изображение или увеличение, сравнимое со щелевой лампой.

Щелевая лампа позволяет исследовать глаз с помощью луча или «щели» света (в отличие от рассеянного света), высоту и ширину которого можно регулировать. Световая щель, направленная под углом, подчеркивает анатомические структуры глаза, позволяя внимательно рассмотреть. Щелевая лампа обеспечивает большее увеличение (от 10 до 25 раз) и освещенность, чем большинство портативных устройств (например, лампа Вуда [4x] и блюминатор [7,5x]), что необходимо для диагностики ряда травматических и нетравматических нарушений.

Показания к использованию щелевой лампы

Показания к использованию щелевой лампы в неофтальмологических условиях включают любое острое состояние, требующее увеличения для осмотра переднего сегмента глаза (т. е. век, ресниц, конъюнктивы, роговицы, передней камеры, радужной оболочки и хрусталика) или облегчить удаление инородного тела из глаза. Таким образом, он хорошо подходит для диагностики таких состояний, как дефект эпителия роговицы, кератоконъюнктивит, гифема, гипопион, дислокация хрусталика, герпетические инфекции, ирит или оценка эффекта красных глаз.

Щелевая лампа менее полезна при диагностике заболеваний заднего сегмента (т. е. стекловидного тела, глазного дна, диска зрительного нерва) в кабинете первичной медико-санитарной помощи или отделении неотложной помощи. К таким состояниям относятся отек диска зрительного нерва, кровоизлияние в стекловидное тело и отслоение сетчатки. Диагностика таких состояний с помощью щелевой лампы возможна только при наличии специальных приспособлений, а также при наличии у исследователя соответствующей подготовки и опыта их использования.

Противопоказания и меры предосторожности при работе со щелевой лампой

Абсолютных противопоказаний для проведения обследования с помощью щелевой лампы нет. Тем не менее, следующие моменты заслуживают особого внимания:

Пациентов с возможной травмой открытого глазного яблока следует обследовать с особой осторожностью, и клиницисты должны избегать давления на глазное яблоко (например, при выворачивании века или удалении инородного тела [ИТ]) до тех пор, пока это повреждение не будет исключено.

Пациенты, подвергшиеся воздействию едких веществ, должны быть тщательно промыты и документально подтверждено нормальное значение рН конъюнктивальной жидкости до начала обследования.

При удалении ИК необходимо соблюдать осторожность, чтобы избежать травм в результате резкого движения пациента или потери ориентации инструментом, используемым для удаления ИК (например, иглой или фрезой).

Детей можно осматривать с помощью родителей, при их утешении и в специальном положении в щелевой лампе. Подумайте об использовании портативной щелевой лампы.

Подготовка к использованию щелевой лампы

Пациенты, проходящие обследование с помощью щелевой лампы по поводу острого заболевания глаз, часто испытывают дискомфорт или опасения. Использование местных офтальмологических анестетиков (например, пропаракаиновых капель) уменьшает боль. Затемнение комнаты и обеспечение уверенности также могут улучшить комфорт пациента.

Консультирование пациентов. Особых рисков, присущих СКВ, которые требуют информированного согласия, не существует, но цель и методы СКВ должны быть четко объяснены. О возможных осложнениях удаления инородного тела (ИТ), таких как перфорация глазного яблока, не сообщалось. Дефект эпителия роговицы (например, CED или эрозия роговицы) является еще одним потенциальным осложнением удаления ИТ.

Материалы. Процедура обычно проводится в комнате с контролем освещения и необходимых материалов. Портативные и ручные устройства легко доступны, что позволяет проводить оценку у постели больного. Адаптеры для смартфонов как для стационарных, так и для ручных щелевых ламп позволяют выполнять цифровую фото- и видеосъемку. Материалы, необходимые для проведения процедуры, могут включать анестезирующие капли, аппликатор с ватным наконечником, ватный тампон, флуоресцентную полоску, сверло или иглу 18 размера, марлю или салфетку, раствор для промывания глаз и устройство для снятия контактных линз.

Процедура обследования с помощью щелевой лампы

Общие соображения. Перед выполнением обследования с помощью щелевой лампы необходимо собрать соответствующий анамнез и выполнить внешнее обследование глаз, включая оценку остроты зрения и черепно-мозговых нервов.

Пациенты, прошедшие обследование на щелевой лампе, могут быть временно чувствительны к свету (светобоязнь). Необходимо приглушить окружающий свет в комнате и экономно использовать максимальное освещение во время обследования, чтобы уменьшить дискомфорт. Необходимо развеять опасения пациента, предоставив ему необходимую информацию о процедуре. Это особенно важно при любом маневре, связанном с физическим контактом с глазом, будь то закапывание лекарств, промывание глаза, использование бумажной полоски для измерения pH или использование ватного тампона или инструмента для удаления инородного тела (ИТ). Необходимо дать четкие инструкции о том, что должен делать пациент (например, движение глаз, положение, моргание) и что он, вероятно, почувствует. При обследовании детей их необходимо расположить на коленях у члена семьи, отрегулировав подбородочную скобу по их росту. Для младенцев, инвалидов или пациентов с патологическим ожирением необходимо рассмотреть возможность использования переносной щелевой лампы.

Если обследуемый носит корректирующие линзы, рекомендуется не снимать их во время обследования. Если нет, следует обратить особое внимание на фокусировку лампы. Необходимо спросить об использовании контактных линз, прежде чем закапывать какие-либо лекарства в глаза. Флуоресцеин навсегда окрашивает контактные линзы, так что их необходимо снять перед его нанесением. Если есть подозрение на внутриглазное повреждение глазного яблока или открытое глазное яблоко в результате проникающей или тупой травмы, необходимо закрыть глаз защитным экраном и немедленно обратиться к офтальмологу.

Анальгезия и седация. Необходимо использовать местный анестетик для облегчения процедуры, когда мешают боль в глазах или блефароспазм. Перед закапыванием средства необходимо сообщить пациенту, что все средства для местного применения вызывают кратковременную боль до того, как они подействуют. Предлагается использовать пропаракаин для местной анестезии во время процедуры, так как это может вызвать меньшую боль и более продолжительную анестезию. Использование местных анестетиков при эрозиях роговицы и других причинах боли в глазах имеет свои особенности.

Анестетики обычно разлагаются быстрее, если их оставляют при комнатной температуре более одной недели. Следует отказаться от агентов, которые меняют цвет с прозрачного на светло-коричневый. По возможности следует использовать флаконы с разовой дозой, чтобы снизить риск заражения.

Настройка и позиционирование пациента. Первым шагом в выполнении процедуры обследования является обеспечение правильной настройки щелевой лампы для исследования, исследователя и пациента:

• Разместите дополнительные материалы или оборудование в пределах досягаемости.
• Отрегулируйте высоту кресла врача для удобства.
• Ослабьте стопорную гайку на узле щелевой лампы, чтобы обеспечить свободное движение.
• Установите каждую линзу окуляра на «0».
• Отрегулируйте межзрачковое расстояние, взявшись за корпус бинокля, прикрепленный к объективу, и раздвиньте или сдвиньте окуляры, чтобы выполнить регулировку.
• Установите малое увеличение.
• Поместите пациента в опору для подбородка и попросите пациента держать лоб в контакте с подголовником все время во время процедуры.
• Отрегулируйте высоту стола для удобства пациента.
• Отрегулируйте высоту упора для подбородка так, чтобы зрачки совпадали с маркером. Это помещает глаз в диапазон регулировки высоты по вертикали на щелевой лампе.
• Пациенты могут держать подлокотник для щелевой лампы или класть руки на колени.

Фокусировка щелевой лампы. Этот шаг имеет решающее значение для просмотра таких деталей, как клетки в передней камере, или оценки глубины поражения роговицы. После подготовки оборудования и размещения пациента выполните следующие действия:

• Настройте луч щелевой лампы на высокий узкий вертикальный луч белого света. Ширина щели должна быть отрегулирована, чтобы сделать луч как можно более узким, не вызывая уменьшения освещенности.
• Направьте луч на переносицу пациента примерно под углом 45 градусов.
• Переместите всю сборку (грубый фокус) внутрь и наружу вдоль оси света, наблюдая за лучом света. Пока не смотрите на луч через линзы объектива, а смотрите прямо, глядя по сторонам объективов. Цель состоит в том, чтобы сделать щель света четкой и резкой.
• Как только снаружи станет виден четкий сфокусированный луч, посмотрите в линзы объектива и убедитесь, что микроскоп работает на низком увеличении.
• Отрегулируйте джойстик (точная фокусировка) внутрь и наружу, чтобы получить четкую щель. Закройте каждый глаз и получите четкое изображение по одному глазу за раз, регулируя линзы объектива (окуляры). Для эмметропических глаз или для тех, у кого скорректирована острота зрения, требуется лишь небольшая корректировка. Для тех, кто имеет нескорректированные близорукие или дальнозоркие глаза или предпочитает не носить корректирующие линзы, потребуется большая корректировка. После достижения фокуса можно выполнять диагностику.

Чтобы получить быструю постоянную фокусировку от одного исследования к другому на одной и той же щелевой лампе, экзаменатор может захотеть определить свое индивидуальное рефракционное состояние с помощью фокусирующего стержня (имеется в большинстве щелевых ламп). Для этого выполните следующие шаги:

• Вставьте фокусировочный стержень в поворотную стойку перед микроскопом.
• Направьте щелевой луч в центр плоской поверхности стержня и установите ширину луча от 1 до 2 мм.
• Сфокусируйте окуляры по отдельности на щелевом луче, начиная окуляр с положительной стороны шкалы и останавливаясь в точке, в которой изображение сначала кажется резко сфокусированным.
• Обратите внимание на настройку на шкале окуляра и всегда используйте эту настройку при использовании щелевой лампы.
• Снимите фокусировочный стержень.

Проведение обследования. Осмотрите следующие области: веки, ресницы, конъюнктиву, роговицу, переднюю камеру и хрусталик. СКВ также можно использовать для проведения аппланационной тонометрии (здесь не обсуждается). Как только пациент находится в нужном положении, оборудование настраивается, а щелевая лампа фокусируется и настраивается на низкую мощность. Обследование проводится следующим образом:

• Убедитесь, что угол проецирования света примерно 45 градусов от височной до носовой, и что свет проецируется в виде высокого, узкого, сфокусированного луча.
• Прежде чем смотреть в окуляры, посмотрите на веки невооруженным глазом, одновременно сдвинув весь узел вперед и по направлению к векам. Наблюдайте, пока не увидите четкий луч света (щель) на веках (аналогично фокусировке на переносице, описанной выше). Расфокусированный луч кажется нечетким.
• Теперь посмотрите в окуляры и отрегулируйте положение с помощью джойстика, чтобы сохранить фокус при перемещении всего узла через глаз.

Нижнее веко/ресницы/конъюнктива

• Используйте регулировку высоты по вертикали, чтобы увидеть нижнее веко. Используйте аппликатор с ватным наконечником, чтобы облегчить движение век в этой части исследования.
• Используйте плавные движения джойстика вперед и назад, чтобы сфокусироваться на нижнем веке, одновременно перемещая всю сборку по горизонтали, чтобы увидеть нижнее веко и ресницы.
• Используйте аппликатор, чтобы визуализировать конъюнктиву век, поместив ее горизонтально под нижнее веко и прокатив вниз, попросив пациента смотреть вверх. Это выворачивает нижнее веко и позволяет исследовать конъюнктиву век.

Верхнее веко/ресницы/конъюнктива

• Попросите пациента смотреть вниз.
• Используйте вертикальную регулировку высоты, чтобы центрировать луч света на верхнем веке и ресницах.
• Используйте плавные движения джойстика вперед и назад, чтобы сфокусироваться на верхнем веке, одновременно перемещая всю сборку по горизонтали, чтобы увидеть верхнее веко и ресницы.
• Если показано исследование пальпебральной конъюнктивы верхнего века (подозрение на ИТ из-за механизма повреждения или картины поглощения флуоресцеина роговицей), выворот века можно выполнить следующим образом:
     ○ Расположите щелевую лампу горизонтально вдоль глазной складки верхнего века. Слегка поверните лампу, чтобы вывернуть ресницы, чтобы их было легче захватить. Возьмитесь за верхние ресницы свободной рукой, слегка оттяните их в сторону, а затем потяните вверх, используя лампу в качестве точки опоры. Верхнее веко необходимо отодвинуть от пациента, прежде чем подтягивать, чтобы вывернуть веко вокруг точки опоры. Просто потянуть крышку, не отдергивая ее, обычно не удается.
     ○ Держите верхнее веко в вывернутом положении большим пальцем, пока щелевая лампа перемещается горизонтально для панорамирования теперь обнаженной конъюнктивы век. Используйте легкие движения джойстика внутрь и наружу для фокусировки. Когда исследование этого сегмента завершено, отпустите верхнее веко и попросите пациента посмотреть вверх и моргнуть, чтобы вернуть веко в нормальное положение.

Роговица

• Используйте регулировку высоты по вертикали, чтобы центрировать луч на центральной части роговицы либо на носовом, либо на височном лимбе (край роговицы).
• Убедитесь, что установлено малое увеличение.
• Используйте плавные движения джойстика вперед и назад, чтобы сфокусироваться на эпителии роговицы, перемещая всю сборку влево и вправо по горизонтали для просмотра роговицы. Поскольку роговица искривлена в двух измерениях, необходимо будет выполнить несколько корректировок, чтобы визуализировать всю поверхность роговицы. Исследователь не должен допускать отклонения фокуса от эпителия роговицы. Часто перед окрашиванием флуоресцеином можно увидеть небольшой дефект эпителия роговицы.
• Если видно поражение, переключитесь на большую мощность, чтобы рассмотреть поражение более внимательно. Используйте тонкие движения джойстика вперед и назад, чтобы сфокусировать поражение и оценить его размер и глубину, а также любой окружающий инфильтрат или отек роговицы. Угол луча щелевой лампы можно отрегулировать, чтобы лучше рассмотреть поражение.
• При высоком увеличении строма и эндотелий роговицы визуализируются на наличие инфильтрата, отека или кератических преципитатов (скопления эритроцитов или лейкоцитов на поверхности эндотелия). Сморщивание эндотелия роговицы свидетельствует об отеке роговицы. Фокус луча должен быть помещен точно на эндотелии для оценки этих результатов.

Флуоресцентное исследование обычно проводится при подозрении на эрозию роговицы. Выполняется следующим образом:

• Смочите флуоресцеиновую полоску одной каплей жидкости (например, физиологического раствора или местного анестетика).
• Оттяните нижнее веко вниз, попросив пациента посмотреть вверх.
• Прикоснитесь кончиком полоски к нижнему конъюнктивальному своду, стараясь не повредить роговицу. Местная анестезия не требуется, если делается аккуратно.
• Попросите пациента поморгать. Зеленоватый оттенок роговицы указывает на адекватную инстилляцию флуоресцеина. Лучше всего это можно оценить, наблюдая невооруженным глазом луч щелевой лампы, направленный на роговицу. Если зеленый оттенок не виден, повторите нанесение. Цель состоит в том, чтобы нанести минимально необходимое количество флуоресцеина; слишком много будет скрывать тонкие эрозии. Если нанесено слишком много, промойте глаз и перейдите к следующему этапу исследования.
• Выберите кобальтово-синий фильтр и расширьте луч щели, повернув регулятор ширины.
• Правильно расположите пациента в щелевой лампе и наблюдайте за роговицей при слабом увеличении, как описано выше.
• Используйте высокое увеличение по мере необходимости для выявления тонких (точечных) или дендритных (герпетических) поражений, которые флуоресцируют. Внешний вид эрозий часто дает исследователю ключ к разгадке его этиологии. Инфильтраты, которые видны при белом свете, но не видны при использовании синего кобальтового фильтра, являются субэпителиальными и не являются эрозией.

Тест Зейделя. В этом тесте используется флуоресцеин для выявления предполагаемой микроперфорации глазного яблока.

• Нанесите местный анестетик.
• Выберите кобальтово-синий фильтр и максимально расширьте щелевой луч, повернув регулятор ширины.
• Смочите флуоресцеиновую полоску несколькими каплями жидкости (например, физиологического раствора или местного анестетика).
• Прикоснитесь концом полоски к глазу рисующим движением, чтобы максимизировать контакт между глазом и полоской.
• Обеспечьте правильное положение пациента в щелевой лампе и наблюдайте за роговицей при слабом увеличении, как описано выше. Небольшая перфорация вызовет осветление плотного флуоресцеина, который будет казаться вытекающим из места перфорации. Это положительный тест Зейделя, указывающий на перфорацию глазного яблока.
• Если тест Зейделя положительный, защитите глаза экраном и немедленно обратитесь к офтальмологу.

Удаление инородного тела проводится следующим образом:

• Примените адекватную местную анестезию.
• Подчеркните пациенту необходимость максимального соблюдения положения во время процедуры.
• Успокойте пациента (осложнения и перфорация крайне маловероятны).
• Возьмите устройство для удаления (бор или иглу со шприцем рукой с той же стороны, что и инородное тело. При использовании иглы снимите колпачок, осторожно сдвинув его с иглы, а не стягивая его, взявшись за колпачок одной рукой, а иглу-шприц — в другую (что может привести к травме от укола иглой).
• Положите руку на щеку пациента, чтобы стабилизировать руку во время процедуры, но убедитесь, что устройство для извлечения находится на достаточном расстоянии от глаза.
• Непосредственно наблюдая за устройством для удаления, поместите его в луч света и медленно двигайтесь к глазу, останавливаясь примерно на 3–5 мм перед глазом.
• Наблюдайте за устройством через линзы объектива щелевой лампы и медленно продвигайте его под увеличением до тех пор, пока устройство для удаления и область ИТ не станут четкими и не будут в фокусе.
• Используйте устройство для удаления, чтобы провести ИТ по касательной к роговице для удаления. Удаляйте только то, что легко соскоблить. Нет необходимости агрессивно соскабливать или использовать пункционные движения роговицы. Остаточный материал, такой как кольцо ржавчины, можно легко удалить через 24 часа, так как небольшой участок окружающей ткани некротизируется. При использовании иглы всегда держите ее кончик в поле зрения, чтобы избежать непреднамеренной травмы.

Упражнение для просмотра передней камеры глаза:

• Следуйте инструкциям по положению пациента, настройке оборудования и фокусировке щелевой лампы, как указано выше.
• Установите щелевую лампу на высокую мощность с высоким узким лучом.
• Полностью затемните комнату, чтобы уменьшить окружающее освещение.
• Используйте регулировку высоты по вертикали, чтобы центрировать луч на носовом или височном лимбе (крае роговицы). Ищите сосуд в этой области, который показывает какое-то движение или мерцает при каждой систоле.
• Используйте плавные движения джойстика вперед и назад, чтобы сфокусироваться на сегменте сосуда, который позволяет визуализировать эритроциты (эритроциты) в сосуде. Эритроциты можно увидеть в виде руло (сложенных стопкой, как монеты) или по отдельности, когда они проходят через сосуд с каждой систолой. Обычно это максимальное разрешение, которое можно получить с помощью щелевой лампы для первичной медицинской помощи.
• Исследователь должен иметь навыки для получения этого разрешения, чтобы визуализировать важные данные во время диагностической процедуры. Это упражнение обеспечивает отработку этих навыков. При наличии инструкции наиболее внимательные студенты могут выполнить это упражнение на первом занятии с использованием щелевой лампы.

Осложнения

Серьезные осложнения при осмотре с помощью щелевой лампы встречаются редко и включают перфорацию глазного яблока во время удаления инородного тела (ИТ) и аллергическую реакцию на лекарство, помещенное в глаз. Легкие осложнения включают ятрогенный дефект эпителия роговицы при снятии контактной линзы или контактной линзы и незначительное раздражение от лекарств.

Последующее наблюдение

Обследование с помощью щелевой лампы не требует последующего наблюдения, но часто требуется при острых заболеваниях глаз. Пациенту должны быть даны соответствующие и четкие инструкции, касающиеся диагностики и лечения состояния. Любому пациенту, перенесшему манипуляцию с глазом (например, удаление инородного тела или контактной линзы), следует принять меры предосторожности, чтобы он вернулся в связи с усилением боли, светобоязнью, покраснением глаза и снижением остроты зрения. Лекарства от боли и, возможно, смазывание следует давать до тех пор, пока не произойдет заживление. Последующее наблюдение обычно рекомендуется в течение 24 часов. Большинство клиницистов назначают пациентам с дефектом эпителия роговицы (например, эрозию роговицы) местные антибиотики, хотя рандомизированных контролируемых исследований, подтверждающих эту практику, не существует.

Список литературы / References

1. Akkara JD, Kuriakose A. Commentary: Smartphone-based, wireless, slit-lamp imaging with small footprint - making photodocumentation easy // Indian J Ophthalmol. 2021 May;69(5):1262-1263. doi: 10.4103/ijo.IJO_796_21.
2. Clover J. Slit-Lamp Biomicroscopy // Cornea. 2018 Jun;37 Suppl 1:S5-S6.
3. Cutolo CA, Bonzano C, Scotto R, Iester M, Bagnis A, Pizzorno C, Catti C, Traverso CE. Moving beyond the Slit-Lamp Gonioscopy: Challenges and Future Opportunities // Diagnostics (Basel). 2021 Dec 6;11(12):2279.
4. Damodaran S, Mishra C, Babu N. Polyvivyl chloride deflector: A simple way to reduce slit-lamp lens fogging // Indian J Ophthalmol. 2021 Oct;69(10):2883-2884. doi: 10.4103/ijo.IJO_1164_21.
5. Damodaran S, Sen S, Babu N. Slit-lamp mounted anti fogging fan // Indian J Ophthalmol. 2021 Apr;69(4):997-998.
6. Eaton JS, Miller PE, Bentley E, Thomasy SM, Murphy CJ. Slit Lamp-Based Ocular Scoring Systems in Toxicology and Drug Development: A Literature Survey // J Ocul Pharmacol Ther. 2017 Dec;33(10):707-717.
7. Ezeh EI, Nkanga ED, Chinawa EN, Ezeh RN. Routine slit lamp examination procedures: A risk for severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 infection to eye care professionals // Niger Postgrad Med J. 2020 Oct-Dec;27(4):268-270.
8. Fritz B, Paschko E, Young W, Böhringer D, Wahl S, Ziemssen F, Egert M. Comprehensive Compositional Analysis of the Slit Lamp Bacteriota // Front Cell Infect Microbiol. 2021 Nov 17;11:745653.
9. Hafezi F, Richoz O, Torres-Netto EA, Hillen M, Hafezi NL. Corneal Cross-linking at the Slit Lamp // J Refract Surg. 2021 Feb 1;37(2):78-82.
10. Hooker EA, Faulkner WJ, Kelly LD, Whitford RC. Prospective study of the sensitivity of the Wood's lamp for common eye abnormalities // Emerg Med J 2019; 36:159.
11. Hu S, Wu H, Luan X, Wang Z, Adu M, Wang X, Yan C, Li B, Li K, Zou Y, Yu X, He X, He W. Portable Handheld Slit-Lamp Based on a Smartphone Camera for Cataract Screening // J Ophthalmol. 2020 Aug 1;2020:1037689.
12. Hung N, Shih AK, Lin C, Kuo MT, Hwang YS, Wu WC, Kuo CF, Kang EY, Hsiao CH. Using Slit-Lamp Images for Deep Learning-Based Identification of Bacterial and Fungal Keratitis: Model Development and Validation with Different Convolutional Neural Networks // Diagnostics (Basel). 2021 Jul 12;11(7):1246.
13. Hwang J, Karanam V, Wang J, Feuer WJ, Garg RK, Tamariz L, Galor A. Conjunctival Vessels in Diabetes Using Functional Slit Lamp Biomicroscopy // Cornea. 2021 Aug 1;40(8):950-957.
14. Karanam VC, Tamariz L, Batawi H, Wang J, Galor A. Functional slit lamp biomicroscopy metrics correlate with cardiovascular risk // Ocul Surf. 2019 Jan;17(1):64-69.
15. Khadia A, Nachiappan S, Kalita IR, Singh HV, Vedachalam R, Venkatesh R. Safe Slit-lamp Shield: Maintaining a balance between ergonomics and safety // Indian J Ophthalmol. 2020 Nov;68(11):2486-2489.
16. Knoop K, Trott A. Ophthalmologic procedures in the emergency department--Part I: Immediate sight-saving procedures // Acad Emerg Med 1994; 1:408.
17. Knoop K, Trott A. Ophthalmologic procedures in the emergency department--Part III: Slit lamp use and foreign bodies // Acad Emerg Med 1995; 2:224.
18. Lahaie Luna G, Parel JM, Gonzalez A, Hopman W, Rowaan C, Khimdas S, Hove MT. Validating the use of a stereoscopic robotized teleophthalmic drone slit lamp // Can J Ophthalmol. 2021 Jun;56(3):191-196. doi: 10.1016/j.jcjo.2020.10.005.
19. Martin R. Cornea and anterior eye assessment with slit lamp biomicroscopy, specular microscopy, confocal microscopy, and ultrasound biomicroscopy // Indian J Ophthalmol. 2018 Feb;66(2):195-201. doi: 10.4103/ijo.IJO_649_17.
20. Matoba A, Goosey J, Chévez-Barrios P. Microsporidial Stromal Keratitis: Epidemiological Features, Slit-Lamp Biomicroscopic Characteristics, and Therapy // Cornea. 2021 Dec 1;40(12):1532-1540. doi: 10.1097/ICO.0000000000002704.
21. Mulchandani D, Reiser BJ, Ho TC, Reid MW, Stewart C, Lee TC, Nallasamy S. Evaluation of digital slit-lamp videos for paediatric anterior segment telemedicine consultations // J Telemed Telecare. 2021 Feb 3:1357633X21990991.
22. Nankivil D, Gonzalez A, Rowaan C, Lee W, Aguilar MC, Parel JA. Robotic Remote Controlled Stereo Slit Lamp // Transl Vis Sci Technol. 2018 Jul 2;7(4):1. doi: 10.1167/tvst.7.4.1.
23. Ong SC, Razali MAB, Shaffiee L, Yap JX, Fei TTY, Loon SC, Koh V. Do Slit-Lamp Shields and Face Masks Protect Ophthalmologists amidst COVID-19? // Ophthalmology. 2020 Oct;127(10):1427-1429.
24. Pathak Ray V, Ramesh SB, Rathi V. Slit-lamp measurement of anterior chamber depth and its agreement with anterior segment optical coherence tomography and Lenstar LS 900 in pseudoexfoliation and normal eyes // Indian J Ophthalmol. 2021 Sep;69(9):2469-2474.
25. Peyman A, Pourazizi M. Corneal Cross-linking at the Slit Lamp: Concern About Risk of Corneal Ulcer // J Refract Surg. 2021 Aug;37(8):572. doi: 10.3928/1081597X-20210615-01. Epub 2021 Aug 1.
26. Shu X, Wang J, Hu L. A review of functional slit lamp biomicroscopy // Eye Vis (Lond). 2019 May 21;6:15.
27. Solyman O, Ahmad M, Arora K, Henderson AD, Carey A. Stereoscopic three-dimensional (3D) slit-lamp photography using a compact 3D digital camera // Indian J Ophthalmol. 2021 May;69(5):1303-1305.
28. Trehan HS, Sharma VK. Slit-Lamp Infection Protector Cover for COVID-19 // Cornea. 2021 Mar 1;40(3):e2.
29. van den Berg TJTP. Intraocular light scatter, reflections, fluorescence and absorption: what we see in the slit lamp // Ophthalmic Physiol Opt. 2018 Jan;38(1):6-25.
30. van der Merwe P, Felfeli T, Mandelcorn ED. A practical approach to slit-lamp smartphone photography // Can J Ophthalmol. 2022 Jun;57(3):e75-e76. doi: 10.1016/j.jcjo.2021.05.012.
31. Wu CHK, Jarrar Z, Harsum S. Building the barricade-DIY slit lamp breath shield // BMJ Open Qual. 2021 May;10(2):e001361.
32. Yazu H, Shimizu E, Sato S, Aketa N, Katayama T, Yokoiwa R, Sato Y, Fukagawa K, Ogawa Y, Tsubota K, Fujishima H. Clinical Observation of Allergic Conjunctival Diseases with Portable and Recordable Slit-Lamp Device // Diagnostics (Basel). 2021 Mar 17;11(3):535. doi: 10.3390/diagnostics11030535.
33. Багдасаров А.А., Багдасарова О.В., Данчина Е.В. Ручная щелевая лампа на базе микроскопа Грену для офтальмологии // Приборостроение. 2014. №12.
34. Новиков О. О., Саввин В. А., Жилякова Е. Т., Новикова М. Ю., Покровский М. В., Да Фадеева Разработка устройства для крепления цифровой фотокамеры на щелевой лампе // Актуальные проблемы медицины. 2012. №10 (129).
35. Оскирко С. А., Салмин В. В., Лазаренко В. И., Проворов А. С., Владимирова Е. С., Фокина Д. С., Салмина А. Б. Лазерно-флуоресцентная диагностика стадий возрастной катаракты // Сиб. мед. журн. (Иркутск). 2007. №6.
36. Пантелеев Л. Н., Астахов Ю. С., Иванов А. А., Соболев Ю. В., Акопов Е. Л. Офтальмологический лечебно-диагностический комплекс на основе щелевой лампы и мультиволнового лазера // ВНМТ. 2013. №4.